🍎 用基于核酸的方法定性检测食品(也包括饲料和植物样品)中的转基因生物(GMO)及其衍生产品——按 ISO 21571 提取的 DNA 用 PCR 扩增(凝胶电泳或实时 PCR 检测,杂交、限制性酶切或测序确证),目标为分类单元特异性、筛选(例如 35S 启动子)、构建体特异性或转化事件特异性序列;采用 ISO 24276 的对照和判据,引物优化(18–30 个核苷酸,约 60 °C),高度降解的 DNA 采用 60–150 bp 扩增子;结果为“检出/未检出目标序列”,并给出检出限和标准物质,PN-EN ISO 21569

食品化学 PN-EN ISO 21569

三句话速览

食品和饲料中转基因成分的检测基于扩增对植物、筛选元件(例如 35S 启动子)、基因构建体或特定转化事件特异的 DNA 片段。该检测依据 PN-EN ISO 21569:2007;认可范围覆盖(读取于 03.10.2026):3 家实验室,数据库副本 3 条记录,PCA 3 行;“实验室”标签页(“PN-EN ISO 21569”)——生产服务器上全部 3 家。整个程序共 5 个步骤;主要用于:食品中转基因生物及其衍生产品的定性检测;可能用于饲料和环境中的植物样品(1)、分类单元特异性(例如大豆凝集素)、筛选、构建体特异性和转化事件特异性方法(附录 A–D)、饲料和农产品——PCA 中 3 家实验室认可范围内的项目(PCR、实时 PCR)。

要点速览

  • 标准: PN-EN ISO 21569:2007
  • 类别: 食品化学
  • 操作步骤数: 5
  • 现行状态(截至 03.10.2026): PN-EN ISO 21569:2007(波兰文版)——PKN 中无撤销标注,附 A1:2013-07;ISO 21569:2005——“Published”,阶段 90.92(待修订,iTeh)
  • 结果(8、9): “检出”/“未检出”,附 LOD 和标准物质;绝不写“不含转基因”或“±”
  • 结果不一致(A1:2013 修订后的 9.4): 两个平行 +/− → 重做 PCR;仍为 +/− 或 −/− → 试样阴性;从提取起的重复结果不明确 →“在 LOD 水平为阴性”

概述

本标准涵盖的内容。标准正文我们读的是 iTeh 的 ISO 21569:2005 法文版样本(“Produits alimentaires — Méthodes d’analyse pour la détection des organismes génétiquement modifiés et des produits dérivés — Méthodes qualitatives basées sur l’utilisation des acides nucléiques”,第一版,15.06.2005,法文版 2006 年):目录、前言、引言、第 1–10 章以及附录 A 开头至 A.1.5.3(大豆特异性方法)——样本止于第 9 页。欧洲前言我们读的是 SIST EN ISO 21569:2005 样本(英文文本,至 7.6)。附录 A 其余部分以及附录 B(筛选方法)、C(构建体特异性方法)和 D(转化事件特异性方法)我们未读;其标题来自目录。修订单 ISO 21569:2005/Amd 1:2013 我们读的是单独的 iTeh 样本(法文文本,“Amendement 1”,2013-04-01):从封面至 A.6.3.3(第 11 页);新条款 A.6 其余部分我们未读。

根据 ISO 21569:2005 的文本。本标准由 CEN/TC 275“食品分析——横向方法”与 ISO/TC 34 合作制定(维也纳协议);据 EN 前言,各国标准最迟须在 2005 年 12 月采用。引言:转基因成分检测包括采样(ISO 21568)、核酸提取(ISO 21571)、可能的纯化、定量、稀释和分析(例如 PCR);定量方法——ISO 21570,一般要求和定义——ISO 24276;定性检测在方法检出限和分析部分范围内,借助适当对照确定目标序列是否存在;附录 A–D 的方法从筛选到构建体特异性和转化事件特异性方法;符合本标准可能需要 PCR 技术许可。范围(1):在从样品中提取的核酸中定性检测转基因生物及其衍生产品,主要采用 PCR 扩增;规定特异性检测和鉴定目标序列以及确认产品身份的要求;为食品基质制定,也可用于其他基质(例如饲料和环境中的植物样品)。引用文件(2):ISO 21571:2005(提取)、ISO 24276(一般要求和定义,发布时尚在制定中)。原理(4):每种方法须规定目标序列;定性结果须在检出限和试样范围内明确说明遗传元件是否存在;在确认无抑制物后,用 DNA 聚合酶和引物进行变性–退火–延伸循环扩增;用凝胶电泳或其他技术检测,用限制性内切酶、杂交或测序等确认身份;实时 PCR 中扩增与检测同时进行。试剂(5):溶液通常保存于约 −20 °C,分装以避免冻融循环和污染;dNTP(dATP、dCTP、dGTP 和 dTTP 或 dUTP——dUTP 可能影响限制性酶切分析);PCR 缓冲液,MgCl2 浓度因方法而异(见附录);热稳定聚合酶;引物。步骤(7):DNA 须足够纯,其质量和数量对方法和基质具有重复性和再现性;检出限取决于产品加工和 DNA 降解;抑制对照一律按 ISO 24276;对每对引物优化条件(MgCl2、温度程序);最佳反应中少于 40 个循环即可扩增 10 个目标分子,优化的 PCR 在 40 个循环内应能从 100 个拷贝的模板 DNA 得到可检测产物;建议采用热启动 PCR;验证数据可能不适用于其他基质和浓度;产物长度应与提取物中的 DNA 相适应——加工食品中高度降解的 DNA 为 60–150 bp,原料可达约 250 bp;引物 18–30 个核苷酸,最佳退火温度约 60 °C,由实验确定(估计解链温度——65 °C,其关系符号在样本文本中无法辨认),GC:AT 尽量接近 50:50,3′ 端互补性和二级结构尽量小;对特异性进行理论验证(数据库检索,例如 EMBL、GenBank)和实验验证;目标:分类单元特异性、构建体特异性、转化事件特异性序列和筛选元件;对照为强制性(ISO 24276),尽可能以有证标准物质作阳性和阴性对照;用针对另一序列的引物(尤其在筛选之后)或杂交、酶切、测序确认结果;对于来自天然生物(病毒、细菌)的序列,须核实 DNA 是否来自转基因生物——例如 35S 启动子来自花椰菜花叶病毒(CaMV),检出它可能意味着转基因生物,也可能只是 CaMV 本身。结果判读(8):阳性——检出特异性产物且对照符合 ISO 24276 表 2;阴性——对照合格而未检出产物;转化事件特异性序列可能同时存在于一个转基因生物中(叠加性状);结果不明确——重复检测。结果表示(9):不用“±”;阴性结果绝不写成“不含转基因”;检出限须至少关联一种标准物质和该基质中的相对值(例如 0,01 % 时 100 ng GTS 40-3-2 DNA);阴性结果:“样品 X 中未检出目标序列 Y。方法的 LOD 为 x %,用 ABC 测定”,若不能证明目标 DNA 量足以达到 LOD——另加说明该物种 DNA 量可能不足;阳性结果:“样品 X 中检出目标序列 Y”,适用时注明转基因生物身份;两个试样的结果须一致——不一致时重复,尽可能使用更多 DNA,并做抑制对照。试验报告(10):按 ISO 24276,至少包括基质的 LOD、特异性描述和按第 9 章表示的结果。附录 A.1(大豆,凝集素基因 Le1,118 bp 扩增子,琼脂糖凝胶电泳):方法经 BgVV 1997 年(25 家实验室,220 个接受结果,假阳性和假阴性均为 0)和 1998/1999 年(27 家实验室,60 个结果,假阳性和假阴性各 1 个——2 %)实验室间研究验证,按 ISO 21571:2005,A.3 用 CTAB 提取(试样 100 mg);不扩增其他作物、牛肉和猪肉的 DNA;未测定绝对 LOD,至少可检出 0,1 ng 大豆 DNA。

根据修订单 ISO 21569:2005/AMD 1:2013。修订单由 ISO/TC 34“食品”第 SC 16 分委员会“分子生物标志物分析的横向方法”制定。引言:从步骤列表中删除采样(ISO 21568)。对 ISO 24276 的引用加注日期 2006(8.1 中亦同)。4.1 第 1 段——新表述:定性结果须明确指出所研究的遗传元件是否存在,并用适当对照检验;注:检出限和试样大小是方法的关键特性。7.3.3.3.3:针对分类单元特异性序列的引物须能在“适当”(原为“有代表性”)数量的该分类单元不同成员中可靠地检出这些序列。9.4——新表述:同一试样的结果须一致——两个平行出现 +/− 时重做两个 PCR,若新的平行仍为 +/− 或 −/−,该试样判为阴性;所有试样的结果须一致——至少一个试样阳性而另一个阴性时,重复分析;若从提取开始的整个程序至少有一次重复给出不明确结果,报告应说明样品在 LOD 水平为阴性。第 10 章:报告须说明方法的特异性(转化事件特异性、构建体特异性或筛选)。附录 A 新增 A.5——水稻特异性方法(蔗糖磷酸合酶基因 SPS,引物 SPS F/SPS R,279 bp 扩增子,常规 PCR 加电泳):GMDL-SJTU 2007 年实验室间研究,12 家实验室;144 个水稻样品中 1 个假阴性(0,69 %),120 个其他植物样品中 2 个假阳性(1,67 %);LOD 约为玉米粉中水稻质量分数 0,1 %(0,05 % 和 0,01 % 时仅部分实验室为阳性);按 ISO 21571:2005,A.3 用 CTAB 提取;反应体系 30 µl,建议每个反应 100 ng DNA;35 个循环,退火 58 °C;20 g/l 琼脂糖凝胶含溴化乙锭 0,5 µg/ml,5 V/cm,20 min;DNA 溶液 4 °C 最多一周或 −20 °C 保存。新增 A.6——番茄特异性方法(LAT52 基因),针对种子、果实、番茄酱、果汁及其他产品优化:2007 年实验室间研究,13 家实验室;156 个中 1 个假阴性(0,64 %),130 个中 4 个假阳性(3,08 %),据原文可能源于 PCR 操作中的污染;实验室内研究中 LOD 至少为 0,1 %。

现行状态(截至 03.10.2026)。在 PKN 检索(关键词“21569”,03.10.2026)中 PN-EN ISO 21569:2007(波兰文版,“采用:EN ISO 21569:2005 [IDT],ISO 21569:2005 [IDT]”)无撤销标注;另有补充件 PN-EN ISO 21569:2007/A1:2013-07(英文版)。目录卡:发布日期 16.01.2007,71 页,KT 287 生物技术,ICS 67.050,“替代 PN-EN ISO 21569:2005(英文版)”,补充件 PN-EN ISO 21569:2007/A1:2013-07E,无撤销标注。在 iTeh 目录中(读取于 03.10.2026)ISO 21569:2005 状态为“Published”,阶段 90.92(待修订的国际标准),自 29.08.2024 起;目录卡列出的修订文件为 ISO/TS 21569-10:2026,iTeh 检索还显示草案 prEN ISO 21569-1。

多少实验室、以何种形式(认可范围数据库副本,数据载入至 17.09.2026,读取于 03.10.2026)。编号 21569 出现在 3 家实验室的 3 条记录中:AB 465、AB 685、AB 868。在现行 PCA 文件中(读取于 03.10.2026;AB 465 第 31 版,23.12.2025;AB 685 第 19 版,29.01.2026;AB 868 第 21 版,06.03.2026),该标准出现在同样 3 家实验室的 3 行中——AB 685 的那一行中该编号出现 8 次(标准、修订单 A1:2013 以及六份作业指导书 IN-01–IN-06,第 03 版,29.12.2024);每份文件的页码标记数等于 PDF 页数,无重复;检索 03.10.2026 从 BIP 下载的全部 PCA 文件,未发现数据库副本以外的实验室。写法为不带年份的“PN-EN ISO 21569”并附程序 PBD-73.00.00(AB 465)、带作业指导书的“PN-EN ISO 21569:2007”和“PN-EN ISO 21569:2007/A1:2013”(AB 685)、与 PN-EN ISO 21570 并列的“PN-EN ISO 21569”(AB 868)。这些项目均未暂停。“实验室”标签页(关键词“PN-EN ISO 21569”)显示全部 3 家实验室——已于 03.10.2026 在 labcoda.pl 生产服务器上用标签页查询核实。

实验室检测什么(PCA 中的项目)。AB 465:饲料(灵活范围)——转基因修饰是否存在,实时 PCR / PCR;AB 685:饲料——转基因特异序列是否存在:ctp2–cp4 epsps、nptII、bar、pFMV、pat、P-35S、T-nos,实时 PCR;AB 868:农产品和动物饲料(灵活范围)——转基因修饰是否存在及含量,PCR、实时 PCR,与 PN-EN ISO 21570 并列。

容易得到表面正确结果的环节。关于阴性结果:不得写“不含转基因”——只能写“未检出目标序列 Y”并附 LOD 和标准物质,DNA 可能不足时还须加注(9.1、9.2)。关于筛选元件:35S 启动子及其他来自天然生物(CaMV)的元件可能来自感染而非转基因生物——须排除该生物其他 DNA 的存在(7.6);AB 685 检测 P-35S。关于加工后的 DNA:降解会降低可检测性,扩增子应为 60–150 bp(7.1、7.3.2)。关于对照:没有抑制对照、对照不符合 ISO 24276 时,结果既非阳性也非阴性(7.1、8.1);两个试样须给出一致结果(9.4)。关于基质:本标准为食品制定,饲料仅作为可能的应用提及(1)——三家实验室都检测饲料。关于结果不一致:按修订单 A1:2013,重复后仍为 +/− 的试样判为阴性,重复程序得到的不明确结果报告为 LOD 水平阴性(A1 修订后的 9.4)——未修订的文本要求两个试样一致并重复检测。关于版本:AB 685 采用修订单 A1:2013,AB 465 和 AB 868 引用不带年份的标准。

我们不提供的内容。附录 B–D 的方法(筛选、构建体特异性和转化事件特异性)及大豆方法的其余部分我们不引用——它们在样本之外。修订单 A1:2013 中条款 A.6 的其余部分以及 ISO 24276 的内容我们未读。我们不提供法规中的转基因标识阈值。

方法原理

从样品中提取的 DNA(ISO 21571)用针对目标序列——分类单元特异性、筛选元件、构建体特异性或转化事件特异性——的一对引物进行 PCR 扩增,经历变性、引物退火和延伸循环。产物用凝胶电泳或实时 PCR 荧光检测,并用杂交、限制性酶切或测序确认。在对照符合 ISO 24276 的前提下,结果表述为“检出目标序列”或“未检出”,检出限关联到标准物质。

应用领域

关键参数

参数数值
现行状态(截至 03.10.2026)PN-EN ISO 21569:2007(波兰文版)——PKN 中无撤销标注,附 A1:2013-07;ISO 21569:2005——“Published”,阶段 90.92(待修订,iTeh)
结果(8、9)“检出”/“未检出”,附 LOD 和标准物质;绝不写“不含转基因”或“±”
结果不一致(A1:2013 修订后的 9.4)两个平行 +/− → 重做 PCR;仍为 +/− 或 −/− → 试样阴性;从提取起的重复结果不明确 →“在 LOD 水平为阴性”
PCR 灵敏度(7.2)10 个目标分子 < 40 个循环;100 个拷贝在 40 个循环内产生可检测产物
扩增子(7.3.2)高度降解的 DNA:60–150 bp;原料:至约 250 bp
引物(7.3.3.2)18–30 个核苷酸,退火约 60 °C,GC:AT 约 50:50;特异性的理论和实验验证
LOD 示例(9.1)关联到某种物质,例如 0,01 % 时 100 ng GTS 40-3-2 DNA
认可范围覆盖(读取于 03.10.2026)3 家实验室,数据库副本 3 条记录,PCA 3 行;“实验室”标签页(“PN-EN ISO 21569”)——生产服务器上全部 3 家

标准

标准编号
PN-EN ISO 21569:2007
标准名称(波兰语)
Artykuły żywnościowe — Metody wykrywania organizmów zmodyfikowanych genetycznie i produktów pochodnych — Metody jakościowe oparte na kwasach nukleinowych
标准名称(英语)
Foodstuffs — Methods of analysis for the detection of genetically modified organisms and derived products — Qualitative nucleic acid based methods

分步操作程序

  1. DNA 提取

    按 ISO 21571;纯度、数量重复性、抑制对照(7.1)。PN-EN ISO 21569:2007 在 PKN 中无撤销标注(03.10.2026)。

  2. 选择目标和引物

    分类单元、筛选元件、构建体或转化事件;扩增子与 DNA 降解程度相适应(7.3、7.4)。

  3. 带对照的 PCR

    优化 MgCl2 和温度程序,按 ISO 24276 设对照,使用标准物质(7.2、7.5)。

  4. 检测和确认

    电泳或实时 PCR;用杂交、酶切或测序确认;检出 35S 时排除 CaMV(7.6)。

  5. 结果

    对照合格时判为阳性或阴性;表述附 LOD;两个试样一致(8、9)。

所需设备与仪器

设备示例参考价格
热循环仪或实时 PCR 仪要求见 ISO 24276 和附录 A–D(6)—
凝胶电泳装置用 DNA 分子量标准检测 PCR 产物(4.3、7.6)—
约 −20 °C 冰箱保存分装的反应溶液(5)—

试剂、培养基与耗材

试剂CAS详情
dNTP—dATP、dCTP、dGTP 和 dTTP 或 dUTP(5.3)
PCR 缓冲液和 MgCl2—MgCl2 浓度因方法而异(5.4)
热稳定 DNA 聚合酶—建议热启动(5.5、7.2)
正向和反向引物—序列见附录 A–D(5.6、5.7)
有证标准物质—阳性和阴性对照,LOD 参照(7.5、9.1)

职业健康与安全

常见问题

该检测依据哪项标准?

该检测依据的标准为 PN-EN ISO 21569:2007 — 《Foodstuffs — Methods of analysis for the detection of genetically modified organisms and derived products — Qualitative nucleic acid based methods》。

该方法的原理是什么?

从样品中提取的 DNA(ISO 21571)用针对目标序列——分类单元特异性、筛选元件、构建体特异性或转化事件特异性——的一对引物进行 PCR 扩增,经历变性、引物退火和延伸循环。产物用凝胶电泳或实时 PCR 荧光检测,并用杂交、限制性酶切或测序确认。

测量范围和准确度是多少?

现行状态(截至 03.10.2026):PN-EN ISO 21569:2007(波兰文版)——PKN 中无撤销标注,附 A1:2013-07;ISO 21569:2005——“Published”,阶段 90.92(待修订,iTeh);结果(8、9):“检出”/“未检出”,附 LOD 和标准物质;绝不写“不含转基因”或“±”;结果不一致(A1:2013 修订后的 9.4):两个平行 +/− → 重做 PCR;仍为 +/− 或 −/− → 试样阴性;从提取起的重复结果不明确 →“在 LOD 水平为阴性”;PCR 灵敏度(7.2):10 个目标分子 < 40 个循环;100 个拷贝在 40 个循环内产生可检测产物。

完成检测需要多长时间?

整个程序共 5 个步骤。标准未对每个步骤给出时长——实际用时取决于实验室自身的操作程序。

需要哪些设备?

热循环仪或实时 PCR 仪、凝胶电泳装置、约 −20 °C 冰箱。

该检测用于哪些场景?

食品中转基因生物及其衍生产品的定性检测;可能用于饲料和环境中的植物样品(1);分类单元特异性(例如大豆凝集素)、筛选、构建体特异性和转化事件特异性方法(附录 A–D);饲料和农产品——PCA 中 3 家实验室认可范围内的项目(PCR、实时 PCR)。

需要采取哪些安全防护措施?

操作 DNA 和 PCR 试剂——防止交叉污染(分装、分区操作);电泳——DNA 染料和紫外辐射按安全数据表处理。

哪家实验室可以开展此项检测?

该检测由通过 ISO/IEC 17025 认可的实验室开展。在 LabCoda 上可按标准编号检索 PN-EN ISO 21569。

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