🦠 Mesophile Milchsäurebakterien in Lebensmitteln — Plattenzählverfahren auf MRS-Agar (pH 5,7), 30 °C, 72 h

Mikrobiologie PN-ISO 15214

Kurz gefasst

Je 1 ml der Probe oder der Verdünnungen wird im Plattengussverfahren auf zwei Platten gegeben, mit etwa 15 ml MRS-Agar mit pH 5,7 (etwa 47 °C) übergossen, die umgedrehten Platten werden 72 h ± 3 h bei 30 °C bebrütet, und die Kolonien werden auf den Platten mit 15–300 Kolonien gezählt; das Ergebnis als gewogener Mittelwert aus zwei aufeinanderfolgenden Verdünnungen (ISO 7218); wahlweise Oberflächenverfahren mit anaerober oder mikroaerophiler Bebrütung. Die Prüfung erfolgt nach PN-ISO 15214:2002 (ISO 15214:1998); Bebrütung: 30 °C ± 1 °C, 72 h ± 3 h, umgedrehte Platten; das Austrocknen des Agars vermeiden (die Hemmung nimmt zu). Das Verfahren umfasst 7 Schritte; eingesetzt wird sie unter anderem für: Fermentierte Erzeugnisse: Joghurts, Kefire, Käse, Sauergemüse, fermentierte Gemüsesäfte, gereifte Würste — Kontrolle der Starterkulturen und der Zahl lebender Bakterien, Probiotika und Nahrungsergänzungsmittel (Zahl lebender Lactobacillus-Zellen), Untersuchungen der Überlebensfähigkeit im Modell des Verdauungstrakts, Beurteilung des Verderbs von Erzeugnissen durch Milchsäurebakterien (vakuumverpacktes Fleisch, Salate, Getränke).

Auf einen Blick

  • Norm: PN-ISO 15214:2002 (ISO 15214:1998)
  • Kategorie: Mikrobiologie
  • Verfahrensschritte: 7
  • Bebrütung: 30 °C ± 1 °C, 72 h ± 3 h, umgedrehte Platten; das Austrocknen des Agars vermeiden (die Hemmung nimmt zu)
  • Nährmedium: MRS-Agar pH 5,7 ± 0,1 (25 °C); 121 °C 15 min; etwa 15 ml je Platte bei etwa 47 °C
  • Zählen: Platten mit < 300 Kolonien in zwei aufeinanderfolgenden Verdünnungen, ≥ 15 Kolonien auf mindestens einer Platte

Übersicht

ISO 15214:1998 legt ein horizontales Verfahren zur Zahlbestimmung lebender mesophiler Milchsäurebakterien durch das Zählen der Kolonien fest, die nach einer Bebrütung bei 30 °C über 3 Tage in einem festen Nährmedium wachsen; es wird für Erzeugnisse für Menschen und für Futtermittel angewendet. In manchen Erzeugnissen kommen psychrotrophe oder thermophile Milchsäurebakterien vor, die andere Temperaturen erfordern, und nicht alle Milchsäurebakterien wachsen auf MRS-Agar mit pH 5,7 (manche schlecht). Mesophile Milchsäurebakterien werden als Bakterien definiert, die unter den Bedingungen der Untersuchung bei 30 °C in einem festen selektiven Nährmedium (MRS mit pH 5,7) Kolonien bilden. Gepuffertes Peptonwasser gewährleistet nicht immer eine gute Wiederbelebung der Milchsäurebakterien (Anhang A). In der polnischen wissenschaftlichen Literatur (z. B. Untersuchungen zur Überlebensfähigkeit von Lactobacillus-Stämmen im Modell des Verdauungstrakts, ŻNTJ 2015) wird die Zellzahl der Bakterien „nach PN-ISO 15214:2002 auf dem festen MRS-Nährmedium" bestimmt; in der Lehre (UWM) werden von Joghurts und fermentierten Gemüsesäften je 0,1 ml der Verdünnungen auf MRS-Platten ausgebracht und in Anaerobierbehältern mit Beuteln bebrütet.

Prinzip der Methode

Es werden zwei Platten mit MRS-Agar mit pH 5,7 hergestellt, die im Plattengussverfahren (oder gegebenenfalls im Oberflächenverfahren) mit einer festgelegten Menge der flüssigen Probe oder der Erstverdünnung beimpft werden, sowie weitere Plattenpaare aus den Zehnerverdünnungen; die Platten werden 72 h bei 30 °C bebrütet; die Bakterienzahl je g oder ml wird aus der Zahl der Kolonien auf den ausgewählten Platten berechnet, gegebenenfalls nach einer Bestätigung. MRS-Nährmedium (de Man, Rogosa, Sharpe) je 1000 ml: Caseinhydrolysat 10 g, Fleischextrakt 10 g, Hefeextrakt 4 g, Triammoniumcitrat 2 g, Natriumacetat 5 g, MgSO₄·7H₂O 0,2 g, MnSO₄·4H₂O 0,05 g, K₂HPO₄ 2 g, Glucose 20 g, Tween 80 1,08 g, Agar 12–18 g; die Bestandteile werden durch Kochen gelöst, der pH-Wert wird so eingestellt, dass er nach der Sterilisation 5,7 ± 0,1 bei 25 °C beträgt (Toleranz ± 0,1, damit der pH-Wert nicht unter 5,6 fällt), 15 min bei 121 °C sterilisiert und auf etwa 47 °C abgekühlt (aufbewahrtes Nährmedium wird im siedenden Bad geschmolzen und auf 47 °C abgekühlt). Bei der Gefahr einer starken Verunreinigung durch Hefen (z. B. getrocknete Würste) wird Sorbinsäure zugegeben: 1,4 g, gelöst in etwa 10 ml 1 mol/l NaOH, filtrationssterilisiert, auf 1000 ml MRS, das auf 47 °C abgekühlt wurde, End-pH-Wert 5,7 ± 0,1. Handelsübliche Fertignährmedien sind zulässig, doch können ihre Zusammensetzung und ihr pH-Wert abweichen und andere Ergebnisse liefern. Das Oberflächenverfahren mit anaerober oder mikroaerophiler Bebrütung (Kerzentöpfe) sowie ein zweischichtiges Nährmedium sind zulässig. Manche Leuconostoc bilden große schleimige Kolonien, die die Entwicklung anderer erschweren (zu niedriges Ergebnis); wegen des möglichen Wachstums anderer Mikroorganismen auf MRS werden die Kolonien bei manchen Erzeugnissen mit einfachen Tests bestätigt (Gram-Färbung, Katalase) — was im Bericht zu vermerken ist. Berechnung: N = ΣC / [V·(n₁ + 0,1·n₂)·d], gerundet auf zwei signifikante Stellen; bei < 15 Kolonien auf den Platten aus der Probe/Erstverdünnung wird eine geschätzte Zahl angegeben (arithmetischer Mittelwert y; NE = y für flüssige Erzeugnisse, y/d für die übrigen).

Anwendungen

Schlüsselparameter

ParameterWert
Bebrütung30 °C ± 1 °C, 72 h ± 3 h, umgedrehte Platten; das Austrocknen des Agars vermeiden (die Hemmung nimmt zu)
NährmediumMRS-Agar pH 5,7 ± 0,1 (25 °C); 121 °C 15 min; etwa 15 ml je Platte bei etwa 47 °C
ZählenPlatten mit < 300 Kolonien in zwei aufeinanderfolgenden Verdünnungen, ≥ 15 Kolonien auf mindestens einer Platte
ErgebnisN = ΣC/[V(n₁ + 0,1n₂)d], 2 signifikante Stellen, als 1,0–9,9 × 10ⁿ je g oder ml; geschätzte Zahl bei < 15 Kolonien
Zusatz gegen HefenSorbinsäure 1,4 g/l (in 10 ml 1 mol/l NaOH, filtriert)
VariantenOberflächenverfahren + anaerobe/mikroaerophile Bebrütung (Kerzentöpfe); zweischichtiger MRS
Bestätigung (wahlweise)Gram-Färbung, Katalase — für Erzeugnisse, bei denen auf MRS andere Mikroorganismen wachsen

Norm

Normnummer
PN-ISO 15214:2002 (ISO 15214:1998)
Titel (PL)
Mikrobiologia żywności i pasz — Horyzontalna metoda oznaczania liczby mezofilnych bakterii fermentacji mlekowej — Metoda płytkowa w temperaturze 30 stopni C
Title (EN)
Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the enumeration of mesophilic lactic acid bacteria — Colony-count technique at 30 °C

Schritt-für-Schritt-Verfahren

  1. Nährmedium

    Löse die MRS-Bestandteile durch Kochen, stelle den pH-Wert so ein, dass er nach der Sterilisation 5,7 ± 0,1 bei 25 °C beträgt, sterilisiere 15 min bei 121 °C und kühle auf etwa 47 °C ab (aufbewahrtes Nährmedium schmilz im siedenden Bad und kühle auf 47 °C ab); gib bei Hefegefahr die filtrierte Sorbinsäurelösung zu (1,4 g in etwa 10 ml 1 mol/l NaOH je 1 l).

  2. Probe und Verdünnungen

    Stelle die Erstverdünnung und die Zehnerverdünnungen nach ISO 6887-1 her; die Probe muss repräsentativ und beim Transport unbeschädigt sein.

  3. Beimpfung

    Überführe in zwei sterile Platten je 1 ml der flüssigen Probe oder der Erstverdünnung, in die weiteren Paare je 1 ml der weiteren Verdünnungen (für jede Verdünnung eine neue Pipette); beimpfe bei hohen Zahlen nur die für das Zählen erforderlichen Verdünnungen.

  4. Übergießen

    Gieße in jede Platte etwa 15 ml MRS mit einer Temperatur von etwa 47 °C, mische vorsichtig und lasse erstarren (alternativ Oberflächenverfahren mit anaerober oder mikroaerophiler Bebrütung oder zweischichtiger MRS).

  5. Bebrütung

    Bebrüte die umgedrehten Platten 72 h ± 3 h bei 30 °C und schütze den Agar vor dem Austrocknen.

  6. Zählen und Bestätigung

    Zähle die Kolonien auf den Platten mit < 300 Kolonien in zwei aufeinanderfolgenden Verdünnungen und ≥ 15 auf mindestens einer; berücksichtige mögliche schleimige Leuconostoc-Kolonien; bestätige die Kolonien bei Bedarf mit der Gram-Färbung und dem Katalase-Test (vermerke dies im Bericht).

  7. Berechnung

    N = ΣC/[V(n₁ + 0,1n₂)d] (z. B. (168 + 215 + 14 + 25)/[1·(2 + 0,2)·10⁻²] = 19 182 → 1,9 × 10⁴/g); bei < 15 Kolonien — geschätzte Zahl NE = y (flüssige) oder y/d (übrige); Ergebnis als 1,0–9,9 × 10ⁿ je g oder ml.

Erforderliche Geräte und Apparatur

GerätBeispielRichtpreis
Brutschrank 30 °C ± 1 °C
Wasserbad 47 °C ± 2 °C und siedendes BadAbkühlen und Schmelzen des Nährmediums
Petrischalen 90–100 mm, Pipetten 10 ml (0,5 ml) und 1 ml (0,1 ml)
pH-Meter (0,01; ± 0,1 pH bei 25 °C)Einstellen des pH-Werts 5,7
Autoklav und Trockenschrank; wahlweise Anaerobier-/Kerzentöpfenach ISO 7218

Reagenzien, Nährmedien und Verbrauchsmaterialien

ReagenzCASDetails
MRS-Agar (Caseinhydrolysat 10 g, Fleischextrakt 10 g, Hefeextrakt 4 g, Triammoniumcitrat 2 g, Natriumacetat 5 g, MgSO₄·7H₂O 0,2 g, MnSO₄·4H₂O 0,05 g, K₂HPO₄ 2 g, Glucose 20 g, Tween 80 1,08 g, Agar 12–18 g/l), pH 5,7festes selektives Nährmedium für Milchsäurebakterien
Sorbinsäure 1,4 g + NaOH 1 mol/l (etwa 10 ml), filtrationssterilisiertHemmung der Hefen (getrocknete Erzeugnisse, Würste)
Verdünnungsmittel nach ISO 6887-1Erstverdünnung und Verdünnungen (gepuffertes Peptonwasser belebt LAB nicht immer wieder)
Reagenzien für die Gram-Färbung, H₂O₂ für den Katalase-Testwahlweise Bestätigung der Kolonien

Arbeitsschutz und Sicherheit

Häufige Fragen

Welche Norm beschreibt diese Prüfung?

Die Prüfung erfolgt nach PN-ISO 15214:2002 (ISO 15214:1998) — „Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the enumeration of mesophilic lactic acid bacteria — Colony-count technique at 30 °C“.

Wie funktioniert diese Methode?

Es werden zwei Platten mit MRS-Agar mit pH 5,7 hergestellt, die im Plattengussverfahren (oder gegebenenfalls im Oberflächenverfahren) mit einer festgelegten Menge der flüssigen Probe oder der Erstverdünnung beimpft werden, sowie weitere Plattenpaare aus den Zehnerverdünnungen; die Platten werden 72 h bei 30 °C bebrütet; die Bakterienzahl je g oder ml wird aus der Zahl der Kolonien auf den ausgewählten Platten berechnet, gegebenenfalls nach einer Bestätigung. MRS-Nährmedium (de Man, Rogosa, Sharpe) je 1000 ml: Caseinhydrolysat 10 g, Fleischextrakt 10 g, Hefeextrakt 4 g, Triammoniumcitrat 2 g, Natriumacetat 5 g, MgSO₄·7H₂O 0,2 g, MnSO₄·4H₂O 0,05 g, K₂HPO₄ 2 g, Glucose 20 g, Tween 80 1,08 g, Agar 12–18 g; die Bestandteile werden durch Kochen gelöst, der pH-Wert wird so eingestellt, dass er nach der Sterilisation 5,7 ± 0,1 bei 25 °C beträgt (Toleranz ± 0,1, damit der pH-Wert nicht unter 5,6 fällt), 15 min bei 121 °C sterilisiert und auf etwa 47 °C abgekühlt (aufbewahrtes Nährmedium wird im siedenden Bad geschmolzen und auf 47 °C abgekühlt).

Wie groß sind Messbereich und Genauigkeit?

Bebrütung: 30 °C ± 1 °C, 72 h ± 3 h, umgedrehte Platten; das Austrocknen des Agars vermeiden (die Hemmung nimmt zu); Nährmedium: MRS-Agar pH 5,7 ± 0,1 (25 °C); 121 °C 15 min; etwa 15 ml je Platte bei etwa 47 °C; Zählen: Platten mit < 300 Kolonien in zwei aufeinanderfolgenden Verdünnungen, ≥ 15 Kolonien auf mindestens einer Platte; Ergebnis: N = ΣC/[V(n₁ + 0,1n₂)d], 2 signifikante Stellen, als 1,0–9,9 × 10ⁿ je g oder ml; geschätzte Zahl bei < 15 Kolonien.

Wie lange dauert die Prüfung?

Das Verfahren umfasst 7 Schritte. Die Norm gibt nicht für jeden Schritt eine Dauer an — maßgeblich ist das Verfahren des Labors.

Welche Geräte werden benötigt?

Brutschrank 30 °C ± 1 °C, Wasserbad 47 °C ± 2 °C und siedendes Bad, Petrischalen 90–100 mm, Pipetten 10 ml (0,5 ml) und 1 ml (0,1 ml), pH-Meter (0,01; ± 0,1 pH bei 25 °C), Autoklav und Trockenschrank; wahlweise Anaerobier-/Kerzentöpfe.

Wo wird diese Prüfung eingesetzt?

Fermentierte Erzeugnisse: Joghurts, Kefire, Käse, Sauergemüse, fermentierte Gemüsesäfte, gereifte Würste — Kontrolle der Starterkulturen und der Zahl lebender Bakterien; Probiotika und Nahrungsergänzungsmittel (Zahl lebender Lactobacillus-Zellen), Untersuchungen der Überlebensfähigkeit im Modell des Verdauungstrakts; Beurteilung des Verderbs von Erzeugnissen durch Milchsäurebakterien (vakuumverpacktes Fleisch, Salate, Getränke); Futtermittel und Silagen (Impfmittel), pflanzliche Rohstoffe; Qualitätskontrolle des MRS-Nährmediums und der Kulturen in der Milchwirtschaft.

Welche Sicherheitsmaßnahmen gelten?

Milchsäurebakterien sind nicht krankheitserregend, Lebensmittelproben können jedoch Krankheitserreger enthalten — gute mikrobiologische Praxis; Heißer Agar (47 °C) und siedendes Bad — Schutz vor Verbrennungen; 1 mol/l NaOH — ätzend; Anaerobiertöpfe mit Kerze oder mit Generatoren — Vorsicht mit offenem Feuer und Wasserstoff.

Welches Labor führt diese Prüfung durch?

Die Prüfung führen nach ISO/IEC 17025 akkreditierte Labore durch. Auf LabCoda finden Sie sie über die Normnummer PN-ISO 15214.

🔍 Labor finden, das diese Prüfung durchführt