🧫 Gesamtkeimzahl bei 30°C (GKZ)

Mikrobiologie PN-EN ISO 4833-1

Gussplattenverfahren zur Zählung aerober mesophiler Gesamtkeime in Lebensmitteln. Ein allgemeiner Hygieneindikator.

Übersicht

Die Gesamtkeimzahl (GKZ / TVC — Total Viable Count) bei 30°C ist einer der grundlegenden Indikatoren für die mikrobiologische Qualität von Lebensmitteln. Es handelt sich nicht um einen Test auf bestimmte Pathogene, sondern um eine Messung der allgemeinen mikrobiologischen Kontamination — die sogenannte „allgemeine Hygiene“ eines Produkts.

Eine hohe Keimzahl weist auf Folgendes hin: unzureichende Produktionshygiene, Unterbrechung der Kühlkette, zu lange Lagerung, unsachgemäße Lagerbedingungen oder unzureichende Wärmebehandlung.

Das Gussplattenverfahren besteht darin, eine verdünnte Probe mit flüssigem PCA (Plate Count Agar) zu vermischen, bei 30°C über 72 Stunden zu inkubieren und die gewachsenen Kolonien zu zählen. Das Ergebnis wird in KBE/g (koloniebildende Einheiten pro Gramm) angegeben.

Dies ist die Referenzmethode gemäß Verordnung (EG) 2073/2005 für viele Lebensmittelkategorien (Milchprodukte, verzehrfertige Lebensmittel, Tiefkühlprodukte, Säfte).

Prinzip der Methode

Gussplattenverfahren (Pour Plate): 1. Die Probe wird homogenisiert und Dezimalverdünnungen (10⁻¹, 10⁻², 10⁻³...) in Pepton-Kochsalzlösung hergestellt. 2. Je 1 mL jeder Verdünnung wird in eine sterile Petrischale überführt. 3. Etwa 15 mL flüssiger PCA (auf 44–47°C abgekühlt) werden darübergegossen. 4. Mit kreisförmigen Bewegungen gemischt (8× im Uhrzeigersinn, 8× gegen den Uhrzeigersinn) und erstarren gelassen. 5. Umgedrehte Platten werden bei 30±1°C für 72±3 Stunden inkubiert. 6. Kolonien werden auf Platten mit 10–300 Kolonien gezählt.

Ergebnis [KBE/g] = mittlere Kolonienzahl × Kehrwert des Verdünnungsfaktors.

Anwendungen

Schlüsselparameter

ParameterWert
Inkubationstemperatur30 ± 1°C
Inkubationszeit72 ± 3 Stunden
Zählbereich10–300 Kolonien pro Platte
ErgebniseinheitKBE/g oder KBE/mL
Nachweisgrenze<10 KBE/g (bei 10⁻¹-Verdünnung)
NährbodenPCA — Plate Count Agar (Trypton-Glucose)

Norm

Normnummer
PN-EN ISO 4833-1:2013
Titel (PL)
Mikrobiologia łańcucha żywnościowego — Horyzontalna metoda oznaczania liczby drobnoustrojów — Część 1: Oznaczanie liczby metodą płytkową w temperaturze 30°C
Title (EN)
Microbiology of the food chain — Horizontal method for the enumeration of microorganisms — Part 1: Colony count at 30°C by the pour plate technique

Schritt-für-Schritt-Verfahren

1. PCA-Nährboden vorbereiten

PCA in destilliertem Wasser lösen. Im Autoklav bei 121°C/15 Min. sterilisieren. Im Wasserbad auf 44–47°C abkühlen (Agar muss flüssig bleiben, darf aber nicht heiß sein).

⏱ Zeit: 30 Min. • 🌡 Temperatur: 121°C → 44–47°C

2. Probenvorbereitung

10 g Probe in einen Stomacher-Beutel einwiegen. 90 mL Verdünnungsmittel zugeben (1:10 = 10⁻¹-Verdünnung). 1–2 Min. homogenisieren.

⏱ Zeit: 5 Min.

3. Verdünnungsreihe

1 mL der 10⁻¹-Suspension in 9 mL Verdünnungsmittel überführen → 10⁻². Wiederholen: 10⁻³, 10⁻⁴... Für jede Verdünnung eine neue Pipettenspitze verwenden. Zwischen den Transfers vortexen.

⏱ Zeit: 10 Min.

4. Beimpfung — Überführung in Petrischalen

Je 1 mL aus gewählten Verdünnungen in sterile Petrischalen überführen (2 Schalen pro Verdünnung = Doppelbestimmung). Am Bunsenbrenner oder in der Reinraumwerkbank arbeiten.

5. PCA übergießen

Ca. 15 mL flüssigen PCA (44–47°C) in jede Schale gießen. Innentemperatur mit dem Handrücken prüfen — warm, nicht heiß. Sofort mit kreisförmigen Bewegungen mischen: 8× CW, 8× CCW, 8× vor-zurück, 8× seitwärts.

6. Agar erstarren lassen

Platten auf ebener Fläche bis zur vollständigen Erstarrung stehen lassen (~15 Min.). Platten während dieser Zeit nicht bewegen!

⏱ Zeit: 15 Min.

7. Inkubation

Platten umdrehen (Deckel nach unten, um Kondensation auf Kolonien zu verhindern). Bei 30±1°C für 72±3 Stunden inkubieren.

⏱ Zeit: 72 h • 🌡 Temperatur: 30°C

8. Kolonienezählung

Nach 72 h Kolonien auf Platten mit 10–300 Kolonien zählen. Kolonienezähler mit Lupe verwenden. ALLE Kolonien zählen — kleine und große, verschiedener Morphologien.

9. Berechnungen

N = ΣC / [V × (n₁ + 0,1×n₂) × d], wobei ΣC = Koloniensumme, V = Inokulumvolumen (1 mL), n₁ = Anzahl Platten bei niedrigerer Verdünnung, n₂ = bei höherer Verdünnung, d = niedrigere Verdünnung. Ergebnis in KBE/g.

10. Qualitätskontrolle

Kontrollplatte (Blindwert): nur PCA-Agar — kein Wachstum erwartet. Sterilität des Verdünnungsmittels und Nährbodens bei jeder Charge prüfen.

Erforderliche Geräte und Apparatur

GerätBeispielRichtpreis
Brutschrank 30±1°CMemmert IN110, Binder BD 115, POL-EKO ST 25 000–15 000 PLN
Stomacher (Homogenisator)Seward Stomacher 400 Circulator12 000–25 000 PLN
AutoklavTuttnauer 3870ELV30 000–80 000 PLN
Wasserbad 44–47°CGFL 1003, Memmert WNB 14 — zum Halten des PCA im flüssigen Zustand3 000–8 000 PLN
Automatische Pipetten 1 mLEppendorf Research Plus, Brand Transferpette S800–1 500 PLN
Petrischalen ø 90 mmSteril, Einweg, Polystyrol150–300 PLN / 500 St.
KolonienezählerInterscience Scan 500, Stuart SC6+3 000–15 000 PLN

Reagenzien, Nährmedien und Verbrauchsmaterialien

ReagenzCASDetails
Plate Count Agar (PCA)Trypton-Glucose-Agar: Trypton 5 g + Hefeextrakt 2,5 g + Glucose 1 g + Agar 15 g pro Liter. Merck 1.05463, Oxoid CM0325.
Verdünnungsmittel — Pepton-KochsalzlösungNaCl 8,5 g + Pepton 1 g pro Liter Wasser. Merck 1.12535. Für Dezimalverdünnungen.
Verdünnungsröhrchen 9 mLSteril, mit Schraubverschluss, für Verdünnungen 10⁻¹ bis 10⁻⁶
Stomacher-BeutelSteril, mit Seitenfilter (BagFilter), 400 mL

Arbeitsschutz und Sicherheit

Schulungs- und Videomaterialien

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