🫧 BSB5 — Biochemischer Sauerstoffbedarf

Physikochemie PN-EN ISO 5815-1

Bestimmung des Sauerstoffverbrauchs durch Mikroorganismen beim Abbau organischer Substanzen im Wasser über 5 Tage. Ein Schlüsselindikator für organische Verschmutzung.

Übersicht

Der Biochemische Sauerstoffbedarf (BSB5) ist einer der wichtigsten Parameter zur Bestimmung des Grades der organischen Verschmutzung von Wasser und Abwasser. Er gibt die Menge an gelöstem Sauerstoff (in mg O₂/L) an, die von aeroben Mikroorganismen für die biochemische Oxidation organischer Substanzen in einer Wasserprobe während 5 Tagen Inkubation bei 20°C im Dunkeln verbraucht wird.

Der BSB5 ist ein entscheidender Parameter in der Abwasserbehandlungstechnik — er dient zur Dimensionierung von Kläranlagen, zur Überwachung der Effizienz biologischer Prozesse und zur Bewertung der Belebtschlammbelastung. Im Umweltmonitoring ermöglicht er die Bewertung der Auswirkungen von Abwassereinleitungen auf Vorflutern (Flüsse, Seen). Er ist ein Pflichtparameter in wasserrechtlichen Genehmigungen und Abwasserabrechnungen.

Zulässige BSB5-Werte in Polen: Trinkwasser <3 mg O₂/L, gereinigtes Abwasser in Gewässer eingeleitet <25 mg O₂/L (über 10 000 EW), Oberflächengewässer Klasse I <3 mg O₂/L.

Prinzip der Methode

Die Methode beruht auf der Messung der Konzentration des gelösten Sauerstoffs in der Probe vor und nach 5-tägiger Inkubation bei 20±1°C im Dunkeln. Die Probe wird mit belüftetem Verdünnungswasser (sauerstoffgesättigt, mit Mineralsalzen versetzt) in einem Verhältnis verdünnt, das eine Sauerstoffabnahme von 2–5 mg/L nach der Inkubation gewährleistet (mindestens 2 mg/L gelöster Sauerstoff muss verbleiben). Die Zugabe von Allylthioharnstoff (ATH) hemmt die Nitrifikation und eliminiert den Einfluss der Ammoniumstickstoff-Oxidation auf das Ergebnis.

BSB5 = (DO₀ – DO₅) × Verdünnungsfaktor

wobei DO₀ — gelöster Sauerstoff zu Beginn, DO₅ — nach 5 Tagen.

Anwendungen

Schlüsselparameter

ParameterWert
Messbereich0,5–6 000 mg O₂/L (mit Verdünnung)
Bestimmungsgrenze0,5 mg O₂/L
Inkubationstemperatur20 ± 1°C
Inkubationszeit5 Tage ± 4 Stunden
Präzision (VK)5–15% (konzentrationsabhängig)
Erforderliche DO-Abnahmemind. 2 mg/L, Probe muss mind. 2 mg/L DO behalten

Norm

Normnummer
PN-EN ISO 5815-1:2019-12
Titel (PL)
Jakość wody -- Oznaczanie biochemicznego zapotrzebowana tlenu po n dniach (BZTn) -- Część 1: Metoda rozcieńczeń, z dodatkiem materiału zaszczepiającego i allilotiomocznika
Title (EN)
Water quality — Determination of biochemical oxygen demand after n days (BODn) — Part 1: Dilution and seeding method with allylthiourea addition

Schritt-für-Schritt-Verfahren

1. Verdünnungswasser vorbereiten

Deionisiertes Wasser mind. 1 Stunde belüften (bis Sauerstoffsättigung ~8,5 mg/L bei 20°C). Je 1 mL Phosphat-, MgSO₄-, CaCl₂- und FeCl₃-Lösung pro Liter Wasser zugeben.

⏱ Zeit: 1 h

2. ATH-Zugabe

Allylthioharnstoff in einer Endkonzentration von 0,5 mg/L zugeben (1 mL der 5 g/L-Lösung pro 10 L Verdünnungswasser) zur Hemmung der Nitrifikation.

3. Impfung

Inokulum zugeben (5–10 mL Rohabwasser pro Liter Verdünnungswasser) oder fertige Impfkultur verwenden. Nicht impfen, wenn die Probe eigene Mikroflora enthält.

4. Verdünnungsauswahl

Basierend auf dem erwarteten BSB5 mind. 3 Verdünnungen vorbereiten. Z. B. für Rohabwasser (BSB ~200 mg/L): 1:50, 1:100, 1:200. Für Oberflächenwasser: unverdünnt oder 1:2.

⏱ Zeit: 15 Min.

5. Flaschen füllen

300-mL-Winkler-Flaschen mit verdünnter Probe füllen — ohne Luftblasen. Mit Schliffstopfen verschließen, Wasserverschluss auf den Stopfen aufsetzen. Mindestens 2 Flaschen pro Verdünnung.

6. DO₀-Messung (Tag 0)

In einer Flasche jeder Verdünnung den gelösten Sauerstoff (DO₀) messen. Wert auf 0,1 mg/L genau notieren. DO₀ sollte >7 mg/L betragen.

⏱ Zeit: 5 Min.

7. Inkubation

Flaschen im Inkubator bei 20±1°C im Dunkeln aufstellen (Licht hemmt Photosynthese → verfälschte Ergebnisse). 5 Tage ±4 Stunden inkubieren.

⏱ Zeit: 5 Tage • 🌡 Temperatur: 20±1°C

8. DO₅-Messung (Tag 5)

Nach 5 Tagen den gelösten Sauerstoff (DO₅) in den verbliebenen Flaschen messen. Sofort nach Entnahme aus dem Inkubator messen — nicht kräftig mischen.

9. Ergebnisvalidierung

Prüfen: DO-Abnahme ≥2 mg/L, Rest-DO ≥2 mg/L, Blindwert (Verdünnungswasser) ΔDO ≤0,2 mg/L. Nicht konforme Ergebnisse verwerfen.

10. Berechnungen

BSB5 = [(DO₀ – DO₅) – (DO₀Blindwert – DO₅Blindwert)] × Verdünnungsfaktor. Ergebnis in mg O₂/L. Mittelwert aus gewählten Verdünnungen berechnen.

11. Qualitätskontrolle

GGA-Standard: BSB5 = 198 ± 30,5 mg O₂/L (zertifizierter Wert). Bei jeder Probencharge durchführen.

Erforderliche Geräte und Apparatur

GerätBeispielRichtpreis
BSB-Inkubator (20±1°C)WTW TS 606-G/2-i, Binder KB 240, POL-EKO ST 58 000–25 000 PLN
SauerstoffmessgerätWTW Oxi 3310, Hach HQ40d, YSI ProODO3 000–12 000 PLN
BSB-Flaschen 300 mLWinkler-Flaschen mit Schliffstopfen, DURAN30–60 PLN/St.
BelüftungssystemAquariumkompressor mit Diffusor, Belüftung 1 h100–500 PLN
Automatische PipettenEppendorf Research Plus 1–10 mL, Brand Transferpette800–2 000 PLN
Messzylinder100, 250, 500, 1000 mL Klasse A50–150 PLN/St.

Reagenzien, Nährmedien und Verbrauchsmaterialien

ReagenzCASDetails
Allylthioharnstoff (ATH)109-57-9Nitrifikationshemmer, Lösung 5 g/L, Dosierung 1 mL/L Verdünnungswasser
PhosphatpufferlösungKH₂PO₄ (8,5 g) + K₂HPO₄ (21,75 g) + Na₂HPO₄·7H₂O (33,4 g) + NH₄Cl (1,7 g) pro 1 L
MgSO₄-Lösung7487-88-9MgSO₄·7H₂O 22,5 g/L
CaCl₂-Lösung10043-52-4CaCl₂ (wasserfrei) 27,5 g/L
FeCl₃-Lösung7705-08-0FeCl₃·6H₂O 0,25 g/L
Impfmaterial (Inokulum)Rohes Abwasser aus der Kläranlage oder Gartenerde — Quelle für Mikroorganismen
GGA-Standard56-40-6Glucose-Glutaminsäure (150 mg/L Glucose + 150 mg/L Glutaminsäure), BSB5 = 198±30,5 mg/L

Arbeitsschutz und Sicherheit

Schulungs- und Videomaterialien

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