🌿 Test Microtox® — Vibrio fischeri

Środowisko PN-EN ISO 11348-3

Biologiczny test toksyczności wody i ścieków oparty na hamowaniu bioluminescencji bakterii Vibrio fischeri (Aliivibrio fischeri). Szybki screening toksyczności (15–30 min).

Przegląd

Test Microtox® (lub jego odpowiedniki) jest najszybszym i najczęściej stosowanym biotestem do oceny toksyczności wód, ścieków i wyciągów wodnych z gleb i odpadów. Bakteria Vibrio fischeri (dawniej Photobacterium phosphoreum) naturalnie emituje światło (bioluminescencja) dzięki enzymowi lucyferazie. Substancje toksyczne hamują metabolizm bakterii, co powoduje spadek intensywności świecenia.

Wynikiem jest EC50 (stężenie powodujące 50% spadek luminescencji) po 15 i 30 minutach ekspozycji, lub procent hamowania luminescencji dla próbek środowiskowych. Test jest stosowany w klasyfikacji odpadów (toksyczność H14), ocenie toksyczności ścieków i kontroli jakości wody.

Zasada metody

Liofilizowane bakterie Vibrio fischeri są rekonstytuowane w roztworze soli (2% NaCl) i narażane na serię rozcieńczeń próbki. Luminescencja mierzona jest luminometrem przed dodaniem próbki (I₀) i po 5, 15 i 30 minutach ekspozycji (I_t). Procent hamowania = [1 − (I_t/I_kontrola)] × 100. EC50 oblicza się z krzywej dawka-odpowiedź. Temperatura testu: 15°C (optymalna dla V. fischeri).

Zastosowania

Kluczowe parametry

ParametrWartość
Organizm testowyVibrio fischeri (Aliivibrio fischeri), NRRL B-11177
Czas ekspozycji15 i 30 min
Punkt końcowyEC50 lub % hamowania luminescencji
Temperatura testu15 ± 1°C
Czas testu30–45 min (łącznie z przygotowaniem)

Norma

Numer normy
PN-EN ISO 11348-3:2008
Tytuł (PL)
Jakość wody — Oznaczanie hamowania bioluminescencji Vibrio fischeri (test hamowania świecenia) — Część 3: Metoda z zastosowaniem bakterii liofilizowanych
Title (EN)
Water quality — Determination of the inhibitory effect of water samples on the light emission of Vibrio fischeri (Luminescent bacteria test) — Part 3: Method using freeze-dried bacteria

Procedura krok po kroku

1. Przygotowanie próbki

Dostosuj pH próbki do 6–8 (jeśli konieczne). Dostosuj zasolenie do 2% NaCl. Przefiltruj (0,45 µm) jeśli zawiera zawiesinę.

⏱ Czas: 15 min

2. Rekonstytucja bakterii

Dodaj 1 mL schłodzonego roztworu rekonstytucyjnego do ampułki z liofilizatem. Wymieszaj delikatnie. Inkubuj 15 min w 4°C.

⏱ Czas: 15 min • 🌡 Temperatura: 4°C

3. Przygotowanie rozcieńczeń

Przygotuj serię rozcieńczeń próbki: 100, 50, 25, 12,5, 6,25% w 2% NaCl. Kontrola = 2% NaCl.

⏱ Czas: 10 min

4. Pomiar luminescencji I₀

Przenieś bakterie do fiolek pomiarowych (100 µL/fiolkę). Zmierz luminescencję początkową I₀ w luminometrze.

⏱ Czas: 5 min

5. Dodanie próbki

Dodaj 900 µL próbki/rozcieńczenia do fiolek z bakteriami. Wymieszaj delikatnie.

⏱ Czas: 5 min

6. Pomiar po 15 i 30 min

Zmierz luminescencję I₁₅ i I₃₀. Oblicz % hamowania i EC50.

⏱ Czas: 30 min • 🌡 Temperatura: 15°C

Wymagany sprzęt i aparatura

SprzętPrzykładOrientacyjna cena
Luminometr Microtox®Modern Water Microtox M500, LUMIStox 300 (Hach)60 000–120 000 PLN
Blok chłodzący 15°CWbudowany w luminometr lub zewnętrznywbudowany
Pipety automatyczneEppendorf Research Plus 10–1000 µL800–2 000 PLN
Kuwety/fiolki do luminometruFiolki szklane borokrzemowe, op. 500 szt.500–1 000 PLN

Odczynniki, podłoża i materiały eksploatacyjne

OdczynnikCASSzczegóły
Bakterie V. fischeri liofilizowaneMicrotox Acute Reagent, ampułki (5 testów/ampułka), przechowywać -20°C
Roztwór rekonstytucyjny2% NaCl, sterylny, schłodzony do 4°C
Roztwór rozcieńczający (Diluent)2% NaCl, do przygotowania rozcieńczeń próbki
Substancja referencyjna7778-50-9Dichromian potasu K₂Cr₂O₇ lub ZnSO₄, do walidacji czułości bakterii

Bezpieczeństwo i higiena pracy (BHP)

🔍 Znajdź laboratorium wykonujące to badanie