🧪 Formaldehyd w wodzie

Fizykochemia PN-ISO 12460

Spektrofotometryczne oznaczanie formaldehydu w wodzie metodą acetyloacetonową (Hantzsha). Formaldehyd reaguje z acetyloacetonem i jonem amonowym tworząc żółty barwnik (DDL) mierzony przy 410 nm.

Przegląd

Formaldehyd (HCHO) jest najprostszym aldehydem, występującym w wodach jako zanieczyszczenie pochodzenia przemysłowego (produkcja żywic, klejów, tekstyliów), produktem ubocznym ozonowania wody, a także naturalnym produktem rozkładu materii organicznej. Jest klasyfikowany przez IARC jako kancerogen grupy 1. Dopuszczalne stężenie formaldehydu w wodzie pitnej wynosi 50 µg/L wg WHO.

Metoda acetyloacetonowa (metoda Nasha/Hantzsha) jest klasyczną techniką kolorymetryczną opartą na reakcji kondensacji formaldehydu z acetyloacetonem i jonem amonowym w środowisku kwasu octowego. Produktem reakcji jest 3,5-diacetyl-1,4-dihydrolutydyna (DDL) — żółty barwnik o maksimum absorpcji przy 410 nm. Intensywność zabarwienia jest proporcjonalna do stężenia formaldehydu w próbce.

Metoda cechuje się dobrą selektywnością — inne aldehydy (acetaldehyd, propionaldehyd) nie interferują w typowych stężeniach spotykanych w wodzie. Granica oznaczalności wynosi 10–50 µg/L w zależności od drogi optycznej kuwety. Metoda jest stosowana rutynowo w laboratoriach wodno-ściekowych.

Alternatywnie formaldehyd w wodzie można oznaczać metodą HPLC z derywatyzacją DNPH (bardziej czuła, LOD ~1 µg/L) lub metodą enzymatyczną. Metoda spektrofotometryczna pozostaje jednak najprostsza i najtańsza w rutynowej praktyce laboratoryjnej.

Zasada metody

Formaldehyd reaguje z acetyloacetonem (2,4-pentanodionem) i jonem amonowym (z octanu amonu) w reakcji Hantzsha, tworząc 3,5-diacetyl-1,4-dihydrolutydynę (DDL). Jest to reakcja kondensacji prowadząca do powstania żółtego barwnika o maksimum absorpcji przy λ = 410 nm. Reakcja przebiega w temperaturze 40°C przez 30 minut lub w temperaturze pokojowej przez 60 minut. Absorbancja mierzona jest spektrofotometrem UV-Vis w kuwecie 1 cm lub 5 cm. Stężenie formaldehydu oblicza się z krzywej kalibracyjnej sporządzonej z roztworów wzorcowych formaldehydu.

Zastosowania

Kluczowe parametry

ParametrWartość
Długość fali pomiaru410 nm
Zakres pomiarowy10–5 000 µg/L (z rozcieńczaniem)
Granica oznaczalności (LOQ)10–50 µg/L (kuweta 1–5 cm)
Temperatura reakcji40°C / 30 min lub 20°C / 60 min
Precyzja (CV)3–8%
SelektywnośćWysoka — brak interferencji aldehydów C2–C4

Norma

Numer normy
PN-EN ISO 12460-5:2016
Tytuł (PL)
Oznaczanie formaldehydu w wodzie — Metoda spektrofotometryczna z acetyloacetonem
Title (EN)
Determination of formaldehyde in water — Spectrophotometric method with acetylacetone

Procedura krok po kroku

1. Przygotowanie odczynnika Nasha

Rozpuść 150 g octanu amonu w ~800 mL wody dejonizowanej. Dodaj 3 mL kwasu octowego lodowatego i 2 mL acetylooctanu. Uzupełnij do 1 L. Przechowuj w ciemnej butelce w 4°C (stabilny 1 miesiąc).

⏱ Czas: 15 min

2. Przygotowanie wzorców

Ze standardu formaldehydu (37%) przygotuj roztwór roboczy 100 mg/L. Sporządź serię kalibracyjną: 0, 0,05, 0,1, 0,25, 0,5, 1,0, 2,0, 5,0 mg/L w kolbach miarowych 25 mL.

⏱ Czas: 20 min

3. Reakcja barwna — wzorce

Do każdego wzorca (10 mL) dodaj 2 mL odczynnika Nasha. Wymieszaj. Umieść w łaźni wodnej 40°C na 30 minut.

⏱ Czas: 30 min • 🌡 Temperatura: 40°C

4. Chłodzenie

Wyjmij probówki z łaźni wodnej. Ochłodź do temperatury pokojowej w ciemności (30 min). Barwnik DDL jest stabilny przez 2 godziny.

⏱ Czas: 30 min

5. Pomiar absorbancji — kalibracja

Zmierz absorbancję wzorców przy 410 nm względem blanku (woda + odczynnik Nasha). Sporządź krzywą kalibracyjną A = f(c).

⏱ Czas: 15 min

6. Przygotowanie próbek

Do 10 mL próbki wody dodaj 2 mL odczynnika Nasha. Wymieszaj. Inkubuj 40°C / 30 min, chłodź 30 min (jak wzorce).

⏱ Czas: 60 min • 🌡 Temperatura: 40°C

7. Pomiar absorbancji — próbki

Zmierz absorbancję próbek przy 410 nm w kuwecie 1 cm (lub 5 cm dla niskich stężeń). Odczytaj stężenie z krzywej kalibracyjnej.

⏱ Czas: 5 min

8. Obliczenia

Stężenie HCHO [µg/L] = odczyt z krzywej × współczynnik rozcieńczenia. Uwzględnij blank i poprawkę na próbkę kontrolną.

⏱ Czas: 5 min

9. Kontrola jakości

Próbka kontrolna (CRM lub spike 0,5 mg/L) — odzysk 90–110%. Blank < LOQ. Duplikat: RSD < 10%.

⏱ Czas: 10 min

10. Czyszczenie

Wypłucz kuwety wodą dejonizowaną i etanolem. Odczynnik Nasha przechowuj w 4°C w ciemności. Odpady zbieraj do pojemnika na odpady organiczne.

⏱ Czas: 10 min

Wymagany sprzęt i aparatura

SprzętPrzykładOrientacyjna cena
Spektrofotometr UV-VisHach DR 6000, Shimadzu UV-1900i, Agilent Cary 6015 000–80 000 PLN
Kuwety szklane/kwarcowe 1–5 cmHellma, Starna, kuwety optyczne borokrzem/kwarc100–500 PLN/szt.
Łaźnia wodnaMemmert WNB 10, Julabo TW 12, PolyScience WB053 000–10 000 PLN
Pipety automatyczneEppendorf Research Plus 100–1000 µL, 1–5 mL800–2 000 PLN
Kolby miarowe klasy A25, 50, 100, 250 mL, borokrzem klasa A30–80 PLN/szt.
Waga analitycznaMettler Toledo XPR205, Sartorius Quintix 2248 000–25 000 PLN

Odczynniki, podłoża i materiały eksploatacyjne

OdczynnikCASSzczegóły
Acetyloocetan (2,4-pentanodion)123-54-6Cz.d.a., 2 mL na 1 L odczynnika Nasha
Octan amonu (CH₃COONH₄)631-61-8150 g na 1 L odczynnika Nasha — źródło jonu NH₄⁺
Kwas octowy lodowaty (CH₃COOH)64-19-73 mL na 1 L odczynnika Nasha — regulacja pH ~6
Roztwór wzorcowy formaldehydu50-00-0Formaldehyd 37% stabilizowany metanolem, do sporządzenia krzywej kalibracyjnej
Woda dejonizowanaRezystywność >18,2 MΩ·cm, do rozcieńczeń i blanków

Bezpieczeństwo i higiena pracy (BHP)

🔍 Znajdź laboratorium wykonujące to badanie