🧴 Challenge test — ocena ochrony konserwującej

Farmacja i kosmetyki PN-EN ISO 11930

Test skuteczności ochrony konserwującej kosmetyków (challenge test / PET). Inokulacja produktu szczepami testowymi i monitorowanie redukcji drobnoustrojów przez 28 dni wg ISO 11930.

Przegląd

Challenge test (test prowokacji, Preservation Efficacy Test — PET) jest kluczowym badaniem mikrobiologicznym oceniającym zdolność produktu kosmetycznego do ochrony przed wtórnym skażeniem mikrobiologicznym podczas produkcji, przechowywania i użytkowania. Norma PN-EN ISO 11930 opisuje referencyjną metodę oceny ochrony przeciwdrobnoustrojowej kosmetyków.

Test polega na kontrolowanym wprowadzeniu (inokulacji) znanych ilości mikroorganizmów testowych do próbki produktu kosmetycznego, a następnie monitorowaniu zmian liczebności tych drobnoustrojów w ściśle określonych interwałach czasowych przez 28 dni. Redukcja logarytmiczna (log reduction) jest obliczana dla każdego szczep i każdego interwału, a wyniki porównywane z kryteriami akceptacji normy.

Badanie jest wymagane w ramach Safety Assessment (oceny bezpieczeństwa) produktu kosmetycznego zgodnie z Rozporządzeniem (WE) nr 1223/2009. Challenge test jest jednym z podstawowych elementów dokumentacji produktu kosmetycznego (PIF — Product Information File) i jest wymagany przez osobę odpowiedzialną za bezpieczeństwo produktu (safety assessor).

Norma definiuje dwa profile akceptacji: profil A (preferowany — silna ochrona) i profil B (akceptowalny — minimalna ochrona). Wynik challenge testu pozwala potwierdzić, że system konserwujący produktu (konserwanty, pH, aktywność wody, kompozycja) jest wystarczający do ochrony przed realistycznym skażeniem w warunkach użytkowania. Minimalna wymagana ilość próbki to 250 g dla pełnego testu (5 szczepów × duplikaty × 4 punkty czasowe).

Zasada metody

Próbkę produktu kosmetycznego inokuluje się oddzielnie pięcioma szczepami testowymi: Staphylococcus aureus ATCC 6538, Escherichia coli ATCC 8739, Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027, Candida albicans ATCC 10231 i Aspergillus brasiliensis ATCC 16404. Każdy szczep wprowadza się w stężeniu ok. 10⁵–10⁶ CFU/g produktu (inokulacja nie może zmienić składu produktu o więcej niż 1%). Próbki inkubuje się w temperaturze 20–25°C. W dniach 7, 14 i 28 (bakterie i drożdże) oraz 14 i 28 (pleśnie) pobiera się porcje próbki, neutralizuje system konserwujący (metodą rozcieńczeń lub neutralizatorów chemicznych) i oznacza liczbę żywych drobnoustrojów metodą płytkową. Oblicza się redukcję logarytmiczną: log R = log N₀ − log Nₜ, gdzie N₀ to liczba CFU po inokulacji, Nₜ — w dniu t. Wyniki porównuje się z kryteriami profilu A lub B.

Zastosowania

Kluczowe parametry

ParametrWartość
Szczepy testoweS. aureus ATCC 6538, E. coli ATCC 8739, P. aeruginosa ATCC 9027, C. albicans ATCC 10231, A. brasiliensis ATCC 16404
Stężenie inokulum10⁵–10⁶ CFU/g produktu
Temperatura inkubacji20–25°C
Interwały pomiaru (bakterie/drożdże)Dzień 7, 14, 28
Interwały pomiaru (pleśnie)Dzień 14, 28
Profil A (preferowany) — bakterie≥3 log redukcji (dzień 7), ≥3 log (dzień 14), brak wzrostu (dzień 28)

Norma

Numer normy
PN-EN ISO 11930:2019/A1:2022
Tytuł (PL)
Kosmetyki — Mikrobiologia — Ocena ochrony przeciwdrobnoustrojowej produktu kosmetycznego
Title (EN)
Cosmetics — Microbiology — Evaluation of the antimicrobial protection of a cosmetic product

Procedura krok po kroku

1. Przygotowanie szczepów testowych

Aktywuj szczepy liofilizowane na odpowiednich podłożach (TSA dla bakterii, SDA dla grzybów). Wykonaj 2–3 pasaże. Przygotuj zawiesinę o gęstości 10⁷–10⁸ CFU/mL.

⏱ Czas: 3–5 dni

2. Standaryzacja inokulum

Dostosuj gęstość zawiesiny do McFarlanda 0,5 (ok. 10⁸ CFU/mL) lub zmierz densytometrem. Rozcieńcz do uzyskania 10⁶–10⁷ CFU/mL.

⏱ Czas: 30 min

3. Inokulacja próbek produktu

Odważ po 20–30 g produktu do sterylnych naczyń (osobno dla każdego szczepu). Dodaj inokulum w objętości <1% masy próbki. Wymieszaj dokładnie. Uzyskaj stężenie 10⁵–10⁶ CFU/g.

⏱ Czas: 1–2 h

4. Potwierdzenie stężenia początkowego (T₀)

Natychmiast po inokulacji pobierz 1 g próbki. Rozcieńcz w neutralizatorze. Posiej na TSA/SDA. Policz kolonie po inkubacji — potwierdź N₀.

⏱ Czas: 30 min + 48–72 h inkubacji • 🌡 Temperatura: 30–35°C

5. Inkubacja próbek

Przechowuj inokulowane próbki w temperaturze 20–25°C, w ciemności, przez 28 dni. Nie otwieraj bez potrzeby.

⏱ Czas: 28 dni • 🌡 Temperatura: 20–25°C

6. Pobieranie próbek w dniu 7

Pobierz 1 g próbki (bakterie + drożdże). Rozcieńcz w neutralizatorze (Dey-Engley broth). Wykonaj serię rozcieńczeń (10⁻¹ do 10⁻⁵). Posiej na TSA/SDA. Inkubuj.

⏱ Czas: 1 h + 48–72 h inkubacji

7. Pobieranie próbek w dniu 14

Powtórz procedurę z dnia 7 dla wszystkich pięciu szczepów (bakterie, drożdże i pleśnie). Posiew, inkubacja, odczyt.

⏱ Czas: 1 h + 48–72 h / 5–7 dni

8. Pobieranie próbek w dniu 28

Ostatni punkt pomiarowy. Pobierz, rozcieńcz, posiej, inkubuj. Odczytaj i policz kolonie dla wszystkich szczepów.

⏱ Czas: 1 h + 48–72 h / 5–7 dni

9. Obliczenie redukcji logarytmicznej

Dla każdego szczepu i każdego punktu czasowego oblicz: log R = log₁₀(N₀) − log₁₀(Nₜ). Porównaj wyniki z kryteriami profilu A i B normy ISO 11930.

⏱ Czas: 30 min

10. Ocena wyników

Profil A (preferowany): bakterie ≥3 log redukcji do dnia 7, brak wzrostu do dnia 28; drożdże ≥1 log (dzień 7), brak wzrostu (dzień 28); pleśnie — brak wzrostu (dzień 14, 28). Profil B (akceptowalny): łagodniejsze kryteria.

⏱ Czas: 15 min

11. Raport i dokumentacja

Sporządź raport z: identyfikacją produktu, szczepami testowymi, wynikami (tabele CFU/g i log R), oceną profilu A/B, wnioskiem o skuteczności ochrony konserwującej. Archiwizuj jako element PIF.

⏱ Czas: 1–2 h

Wymagany sprzęt i aparatura

SprzętPrzykładOrientacyjna cena
Komora laminarna klasy IIThermo Fisher MSC-Advantage, Esco Labculture, FASTER BH-EN25 000–60 000 PLN
Inkubator 20–25°C (z chłodzeniem)Memmert IPP110, Binder KB240, POL-EKO ST 50010 000–25 000 PLN
Inkubator 30–35°CMemmert IN110, Binder BD1158 000–20 000 PLN
AutoklawTuttnauer 3870ELV, Systec VX-7520 000–60 000 PLN
Łaźnia wodna 45–50°CMemmert WNB 22, GFL 1012, do temperowania podłoży3 000–8 000 PLN
Worteks / vortex mixerIKA Vortex 3, Heidolph Reax top1 500–4 000 PLN
Licznik koloniiInterscience Scan 300, IUL Flash & Go5 000–20 000 PLN

Odczynniki, podłoża i materiały eksploatacyjne

OdczynnikCASSzczegóły
Szczep S. aureus ATCC 6538Liofilizowany szczep referencyjny, przechowywanie -20°C / -80°C, pasaże max 5 od referencyjnego
Szczep E. coli ATCC 8739Liofilizowany szczep referencyjny, przechowywanie w kriokulkach -80°C
Szczep P. aeruginosa ATCC 9027Szczep referencyjny, przechowywanie w kriokulkach -80°C
Szczep C. albicans ATCC 10231Drożdże — szczep referencyjny, hodowla na SDA, 30–35°C
Szczep A. brasiliensis ATCC 16404Pleśń — szczep referencyjny, hodowla na PDA, 20–25°C, zbiór zarodników po 7–14 dniach
Agar kazeinowo-sojowy (TSA)91079-40-2Do hodowli bakterii i oznaczania TAMC, 500 g
Agar Sabouraud Dextrose (SDA)Do hodowli drożdży i pleśni, z chloramfenikolem 50 mg/L
Roztwór neutralizujący (Dey-Engley broth)Bulion neutralizujący szerokie spektrum konserwantów (parabeny, formaldehyd, QAC, izotiazolony)

Bezpieczeństwo i higiena pracy (BHP)

🔍 Znajdź laboratorium wykonujące to badanie